【产品名称】尿液核酸（DNA和RNA）提取或纯化试剂

【包装规格】50次/盒

【预期用途】用于尿液核酸的提取、富集、纯化等步骤。其处理后的产物用于研究检测使用。

【检验原理】由于尿液中的游离核酸和体细胞的含量很低，采用常规的核酸提取方法难以从尿液细胞中获取足量且高质量的核酸。本试剂盒提供了一种简单、快速、高效的从尿液中提取DNA/RNA的方法。独特的缓冲体系使裂解液中的核酸高效特异地结合在硅胶质离心吸附柱上，获得的核酸纯度高，质量稳定，不含蛋白、核酸酶和其他杂质，可适用于各种常规操作，包括PCR、荧光定量PCR等实验。

【包装清单】

 【储存条件及有效期】

储存条件：适合常温运输，长期保存应置于2~8℃

有效期：24 个月。

【适用仪器、耗材】小型冷冻高速离心机，水浴锅。

【样本要求】适用的样本有：尿液。取得样本后，应尽快提取。如不能及时处理，应妥善保存。

【检验方法】

使用前准备：

1、阅读说明书，熟悉操作方法。

自备试剂耗材：无水乙醇、15ml无菌离心管、RNase A 溶液（10 mg/ml）。

2、首次使用前，分别向溶液Ⅲ和Ⅳ瓶中按要求加入无水乙醇，摇匀后标记备用。

3、每次使用前请检查 溶液Ⅱ 是否出现沉淀，如有沉淀，请于 65℃溶解使用。

4、离心均室温进行。

操作步骤：

1、样本的处理。量取10 ml新鲜的尿液，10000 rpm离心2 min，弃上清；然后向细胞沉淀中加入500 μl溶液I，充分悬浮细胞，10000 rpm离心 2 min，弃上清。

2、向离心管中加入250 μl溶II，震荡混匀，65℃水浴10 min。

注意：如果需要无 RNA 的基因组 DNA，可以向离心管中加入 10 μl 10 mg/ml RNase A solution。

3、将步骤2全部溶液移至硅胶膜吸附柱内（吸附柱放入收集管中），10000 rpm 离心1 min，倒掉收集管中溶液，将吸附柱放回收集管中。

注意：吸附柱的最大容量为750 μl，如大于需要过两次吸附柱；如果后续实验需要核酸浓度不是很高，可以只过一次吸附柱。

4、向吸附柱中加入500 μL溶液Ⅲ，10,000 rpm离心1分钟，倒掉收集管中的废液，将吸附柱重新放回收集管中。

注意：溶液Ⅲ使用前请检查溶液是否按比例加入无水乙醇。

5、向吸附柱中加入500 μL溶液Ⅵ，10,000 rpm离心1分钟，倒掉收集管中的废液，将吸附柱重新放回收集管中。

注意：溶液Ⅵ使用前请检查溶液是否按比例加入无水乙醇。

7. 将吸附柱放回收集管中，12000 rpm离心2 min。

注意：此步决不能省略，否则残留的乙醇会严重影响后续实验。

8. 取出吸附柱，放入一个新的1.5 ml离心管中，在吸附膜中央加入30-50 μl溶液Ⅴ，静置3 min，12000rpm离心2 min，得到DNA溶液置于-20℃保存或者直接用于后续实验。

注意：如果想提高核酸的得率，可重复步骤8或将溶液Ⅴ 60℃预热。

【常见问题解答】

1. 得率低

a. 尿液不新鲜或者保存不当导致细胞破裂 DNA 降解；请采用新鲜的尿液，需要保存时请采用适当的保存液（可使用本公司的痰液保存液）。

b. 尿液需要离心获得尿液中细胞，吸弃上清时请勿吸到细胞沉淀

c. 洗脱液不合适。洗脱缓冲液的 pH 值对洗脱效率有影响，如果使用水进行洗脱，请确保其 pH 值>7.5，pH值过低可能导致低洗脱效率。

d. 洗脱过程操作不当。请将洗脱液加入到吸附膜的中央位置。

2. 获得的DNA条带弥散

a. 样品不新鲜。请尽量选择新鲜的样品。

b. 裂解时间过长。裂解时间不要超过120 min。

3. 获得的DNA断裂、降解

a. 样品没有按照要求保存。请使用新鲜样品，样品如果因为某些原因必须先行保存，可以将样品保存于-70℃冰箱。

b. 样品反复冻融。需要保存的样品应分割后保存于-70℃冰箱，避免反复冻融，确保样品的 DNA 未降解。

c. 操作过程过于剧烈，DNA 被机械打断。请严格按照说明书操作。

4. DNA样品不纯，抑制或者干扰后续实验反应

a. 乙醇有残留。请完成第二次洗涤之后，将吸附柱 12000 rpm 2min 空转，开盖室温干燥几分钟之后再进行洗脱。

5. 利用琼脂糖凝胶电泳检验DNA时，加样孔非常亮

a. 大片段的基因组 DNA由于难以电泳出加样孔，会使加样孔非常的亮。

b. 使用的琼脂糖凝胶浓度过高，建议使用 0.8%的琼脂糖凝胶电泳。

c. 获得的 DNA 中含有蛋白质等杂质，建议适当减少样品用量。

    说明书：尿液核酸提取试剂盒